镍琼脂糖凝胶6FF(Ni-NTA琼脂糖凝胶6FF)
产品简介
Ni-NTA琼脂糖凝胶6FF是用于纯化6×His标签重组蛋白的一种纯化介质,它是由6%交联的Sepharose耦连了一种四齿螯合剂NTA而得.它可用于在非变性或变性条件下纯化任何表达系统表达的6xHis标签重组蛋白。NTA,含有四个螯合区,较一般的三齿螯合剂能更好的结合Ni2+。6×His可与Ni2+螯合,从而使His标签蛋白结合在Ni-NTA纯化介质上,未结合的蛋白被洗涤下去,结合在介质上的蛋白经过一定浓度的咪唑或低PH缓冲液的温和洗脱下来,从而得到高纯度的目的蛋白。
镍NTA琼脂糖凝胶6FF特异性好,流速快,螯合镍更稳定,能耐受更高的还原剂,物理和化学稳定性好,批次重复性好。已经螯合好镍离子,使用更方便,由于颗粒粒度均匀,粒径小,所以分离效果更好,可完全代替进口产品。
产品特征:
特点 |
基团密度高,载量大,分辨率高,使用方便。 |
基质 |
6%的交联琼脂糖凝胶 |
配基 |
Ni2+ |
配基密度 |
30-40μmol/ml |
吸附载量 |
≤15mg/ml |
颗粒大小 |
45-165μm |
最大流速 |
600cm/h |
pH范围 |
3-10,在位清洗时pH范围可到2-11 |
保存温度 |
+2~8℃ |
保存液体 |
20%乙醇 |
适用范围
分离能被金属离子吸附的多肽、蛋白、核苷酸、磷酸化蛋白及带His标签的重组蛋白。
应用实例
一.非变性条件下抽提His标签蛋白
1.样品准备
1)准备细胞,接种,诱导表达。对于实验室用的pET载体表达系列,在细胞OD600=0.5-0.8时,用1mMIPTG诱导1-3小时,
可以获得理想的表达效率。收集细胞,置于-70℃或立即进行步骤2操作。
2)加入1/20细胞生长体积的NTA-0 Buffer(20mM Tris-HCl pH7.9,0.5M NaCl,10%Glycerol)和PMSF。PMSF用无水乙醇配制成100mM储存液,-20℃或4℃保存;PMSF使用的工作浓度为1mM;注意:PMSF见水分解,需要在使用前加入。该步骤冰上操作。
3)将细胞悬浮起来,加入溶菌酶(工作浓度为0.2-0.4mg/ml,若表达的宿主细胞内含pLysS或pLysE,可以不加溶菌酶),混匀,冰上放置30分钟,超声或匀浆破碎细胞。该步骤冰上操作。
4)加入10%TritonX-100,使终浓度为0.05%,充分混匀,冰上放置15分钟。
5)1,2000转/分(20,000xg以上),4℃离心15分钟以上。取上清,置于冰上备用或-20℃保存。
2.层析
1)将NTA树脂装入合适的层析柱,层析用10倍NTA体积的NTA-0Buffer洗。
2)将样品加至NTA层析柱中,流速在15ml/h左右,收集穿透部分,用于SDS/PAGE分析蛋白质的结合情况。
3)层析用5倍NTA体积的NTA-0Buffer洗,流速控制在30ml/h左右。
4)分别用5倍NTA体积的NTA-20、NTA-40、NTA-60、NTA-80、NTA-100、NTA-200、NTA-1000Buffer洗脱,流速控制在15ml/h左右,收集洗脱液,每管收集一个NTA体积。
5)确定目标蛋白质在洗脱液中的分布情况。最为有效的方式是SDS/PAGE分析。也可以用Bradford蛋白质测定试剂盒,快速确定蛋白质的含量,然后用SDS/PAGE分析蛋白质的分布。
6)目标蛋白质需要进一步纯化需要根据蛋白质的用途确定。
3.溶液配制
NTA-0Buffer:20mM Tris-HCl pH7.9,0.5M NaCl,10% Glycerol,
NTA-20Buffer:20mM Tris-HCl pH7.9,0.5M NaCl,10% Glycerol,20mM Imidazole(咪唑)
NTA-40Buffer:20mM Tris-HCl pH7.9,0.5M NaCl,10% Glycerol,40mM Imidazole(咪唑)
NTA-60Buffer:20mM Tris-HCl pH7.9,0.5M NaCl,10% Glycerol,60mM Imidazole(咪唑)
NTA-80Buffer:20mM Tris-HCl pH7.9,0.5M NaCl,10% Glycerol,80mM Imidazole(咪唑)
NTA-100Buffer:20mM Tris-HCl pH7.9,0.5M NaCl,10% Glycerol,100mM Imidazole(咪唑)
NTA-200Buffer:20mM Tris-HCl pH7.9,0.5M NaCl,10% Glycerol,200mM Imidazole(咪唑)
NTA-1000Buffer:20mM Tris-HCl pH7.9,0.5M NaCl,10% Glycerol,1000mM Imidazole(咪唑)
二.变性条件下从包涵体中纯化His标签蛋白
1.样品准备
1)准备细胞,接种,诱导表达。对于实验室用的pET载体表达系列,在细胞OD600=0.5-0.8时,用1 mMIPTG诱导1-3小时,可以获得理想的表达效率。收集细胞,置于-70℃或立即进行步骤2操作。
2)加入1/20细胞生长体积的GuNTA-0Buffer(20mMTris-HCl pH7.9,0.5 M NaCl,10% Glycerol,6M Guanidium HCl)和PMSF。PMSF用无水乙醇配制成200 mM储存液,-20℃或4℃保存;PMSF使用的工作浓度位1mM;注意:PMSF见水分解,需要在使用前加入。
3)将细胞悬浮起来,冰上超声破碎细胞,降低粘稠度。
4)室温放置30分钟,间或混匀或用磁力搅拌。
5)12,000转/分(20,000xg以上),4℃离心15分钟以上。取上清,置于冰上备用或-20℃保存。
2.层析
1)将NTA树脂装入合适的层析柱,层析用10倍NTA体积的GuNTA-0 Buffer洗。
2)将样品加到NTA层析柱中,流速控制在15 ml/h左右,收集穿透部分,用于SDS/PAGE分析蛋白质的结合情况。
3)层析用5倍NTA体积的GuNTA-0Buffer洗,流速控制在30 ml/h左右。
4)分别用5倍NTA体积GuNTA-20、GuNTA-40,GuNTA-60、GuNTA-100、GuNTA-500洗脱,流速在15 ml/h左右,收集洗
脱液,每管收集一个NTA体积。
5)确定目标蛋白质在洗脱液中的分布情况。最为有效的方式是SDS/PAGE分析。也可以用Bradford 蛋白质测定试剂盒,快速确
定蛋白质的含量,然后用SDS/PAGE分析蛋白质的分布。
6)目标蛋白质需要进一步纯化需要根据蛋白质的用途确定。
7)纯化的目标蛋白质需要复性,复性常用的手段可以参考有关手册确定的原则,根据蛋白质的特性来摸索具体的方案。
3.溶液配制
GuNTA-0Buffer:20mM Tris-HCl pH7.9, 0.5M NaCl, 10% Glycerol,6M Guanidium HCl
GuNTA-20Buffer:20mM Tris-HCl pH7.9, 0.5M NaCl, 10% Glycerol,6M Guanidium HCl,20 mM Imidazole(咪唑)
GuNTA-40Buffer:20mM Tris-HCl pH7.9, 0.5M NaCl, 10% Glycerol,6M Guanidium HCl,40 mM Imidazole(咪唑)
GuNTA-60Buffer:20mM Tris-HCl pH7.9, 0.5M NaCl, 10% Glycerol,6M Guanidium HCl,60 mM Imidazole(咪唑)
GuNTA-100Buffer:20mM Tris-HCl pH7.9, 0.5M NaCl, 10% Glycerol,6M Guanidium HCl,100 mM Imidazole(咪唑)
GuNTA-500Buffer:20mM Tris-HCl pH7.9, 0.5M NaCl, 10% Glycerol,6M Guanidium HCl,500 mM Imidazole(咪唑)
附:NTA树脂的再生
NTA树脂在使用若干次数(3-5次)后,结合效率有所下降,可以用以下方法再生,提高树脂的使用寿命和蛋白质的结合效率。NTA树脂再生前需要从层析柱下端流干所有溶液,估计出NTA的树脂体积,按下列次序将再生试剂加到层析柱里,在等上一再生溶液流干后,再加下一再生溶解。用户需要自行准备25%、50%、75%、100%(v/v)乙醇和去离子水。
NTA再生步骤:
(1)从层析柱下端流干所有溶液,用2倍NTA树脂体积的Stripping Solution I洗。
(2)用2倍体积的去离子水洗。
(3)用3倍体积的Stripping Solution II洗。
(4)用1倍体积的25%乙醇洗。
(5)用1倍体积的50%乙醇洗。
(6)用1倍体积的75%乙醇洗。
(7)用5倍体积的100%乙醇洗。
(8)用1倍体积的75%乙醇洗。
(9)用1倍体积的50%乙醇洗。
(10)用1倍体积的25%乙醇洗。
(11)用1倍体积的去离子水洗。
(12)用5倍体积的Stripping Solution III洗。
(13)用3倍体积的去离子水洗。
(14)如果立即使用,用5倍体积的Ni Charging Solution洗,再用10倍体积的平衡溶液(NTA-0Buffer或GuNTA-0 Buffer)洗。
(15)如果想长期储存,加入1倍体积的20%乙醇,4℃保存,使用前需要执行步骤14。
注:
Stripping Solution I:6M GuHCl, 0.2M acetic acid
Stripping Solution II:2% SDS
Stripping Solution III:100 mM EDTA, pH 8.0
Ni Charging Solution:100 mM NiSO4 |